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Reproducción asistida en animales de experimentación

Agraria Veterinaria y Sanidad Animal SCORMteca · bajo pedido

Curso de 50 horas del fondo de la SCORMteca de Aprende y Practica.

Qué se aprende

Aplicar técnicas de obtención de gametos y embriones y de transferencia de los mismos en animales de experimentación según protocolos. Aplicar técnicas de conservación «in vitro» de gametos y embriones de las especies de animales de experimentación mediante técnicas de criopreservación.

Contenido

Unidad formativa 1. Reproducción asistida en animales de experimentaciónunidad didáctica 1. Técnicas no naturales de reproducciónobtención de gametos y embriones: Lavado del epidídimo y los vasos deferentes y esperma eyaculado (lavaje de los cuernos uterinos)- Lavado de oviducto y útero- Conservación de espermatozoides, ovocitos y embrionesTécnicas de reproducción asistida: Ventajas e inconvenientes de la inseminación artificial y la fertilización in vitroTécnicas de la Inseminación artificial: Inseminación por…

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Unidad formativa 1. Reproducción asistida en animales de experimentaciónunidad didáctica 1. Técnicas no naturales de reproducciónobtención de gametos y embriones: Lavado del epidídimo y los vasos deferentes y esperma eyaculado (lavaje de los cuernos uterinos)- Lavado de oviducto y útero- Conservación de espermatozoides, ovocitos y embrionesTécnicas de reproducción asistida: Ventajas e inconvenientes de la inseminación artificial y la fertilización in vitroTécnicas de la Inseminación artificial: Inseminación por vía vaginal- Inseminación por vía uterina- Transferencia del esperma dentro del oviducto por procedimiento quirúrgicoEtapas de la Inseminación artificial: Elección de las hembras con elevado índice de fertilidad- Protocolo de superovulación- Sincronización del celo - Inseminación al comienzo del estro- Cruce de hembras con machos vasectomizados - pseudogestaciónEtapas y técnica de la fecundación in Vitro (FIV): Medios de cultivo de los gametos, incubación y fecundación- Factores que influyen en la probabilidad de fecundación- Selección y sistemas de control de embriones- Transferencia de embriones: Implantación quirúrgica de los óvulos fecundadosRederivación de embriones: Objetivo: Mejorar la calidad sanitaria de los animales- Protocolo de rederivación: Superovulación, fertilización natural y transplante de los embriones a una hembra pseudopreñadaUNIDAD Didáctica 2. Conservación y criopreservación de gametos y embrionesfundamentos de criobiología. Principios físicos: temperatura y cambios de estado- Principios químicos: composición de los crioprotectores- Principios biológicos: diferencias entre células, tejidos o especiesEquipos y medios de crioconservación. Equipos de congelación: baños de alcohol, tanques de nitrógeno, congeladores programables, pajuelas, etc. Dos enfoques para la criopreservación: la congelación controlada (lenta y rápida) y la vitrificación (congelación ultra-rápida)- Medios (crioprotectores): elección y concentración del medio en función de la técnicaObjetivos y ventajas de la criopreservación de gametos y embriones: Prevención de la contaminación genética- Limitación de la deriva genética por la variación en la frecuencia de los genes- Mantenimiento de líneas transgénicas y mutantes a largo plazo- Reducción de costes- Control de las patologías asociadas al mantenimiento animales vivosVentajas e inconvenientes de la crioconservación de espermatozoides o embriones: Tiempo- Coste- Recursos materialesCrioconservación de gametos y embriones. Congelación de esperma: crioprotectores, temperaturas y tiempos específicos- Estrategias de congelación de oocitos: en estado inmaduro (en forma de vesícula germinal) y en estado maduro (después de la ovulación) bajo la forma de oocitos en metafase II, con mayor eficacia. Embriones: estadío-eficacia del sistema- Sistemas de identificación, registro y mantenimiento de gametos y embriones criopreservados, bancos de embriones y gametos congelados- Medidas preventivas y de protección durante el manejo de productos para la criopreservación. Control de calidad.

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